Вепрь 209: Вепрь ВПО-209 ( Гладкоствольный Автомат Калашникова) за 49950 руб. в интернет-магазине

Позывной:
Нэн — Чарли — Пункт — Нэн

ПТ-209 служил в ВМС США, Великобритании и Югославии

, завершено 9 февраля 1943 года, помещено в эксплуатацию и присвоено моторное торпеду ПЯТНАДЦАТАЯ лодочная эскадрилья (MTBRon 15) под командованием ком. Стэнли М. Барнс, USN

Вооружение: одна 40-мм установка, четыре 21-дюймовые торпеды, два спаренных пулемета калибра . 50, одна 37-мм установка и одна 20-мм установка

Политика 209 — Кодекс этики

Пересмотрено: 5 мая 2015 г.

I. ЦЕЛЬ

Цель данной политики — помочь каждому члену школьного совета понять свою роль в школьном совете и признать вклад, который должен внести каждый член создать эффективный и ответственный школьный совет.

II. ОБЩЕЕ ПОЛОЖЕНИЕ О ПОЛИТИКЕ

Каждый член школьного совета должен следовать кодексу этики, изложенному в данной политике.

A. КАК ЧЛЕН ШКОЛЬНОГО СОВЕТА, Я БУДУ:

1. Посещать собрания школьного совета.
2. Приходить на заседания, подготовленные для обсуждения вопросов повестки дня.
3. Прислушиваться к мнениям и взглядам других (включая, помимо прочего, других членов школьного совета, администрацию, персонал, учащихся и членов сообщества).
4. Проголосовать за мою совесть после информированного обсуждения, если только я не воздержусь из-за конфликта интересов.
5. Поддерживаю решение школьного совета, даже если моя позиция по этому вопросу была иной.
6. Признать добросовестность моих предшественников и соратников и оценить их работу.
7. Быть в первую очередь мотивированным желанием обеспечить наилучшее образование для учащихся моего школьного округа.
8. Информировать себя о надлежащих обязанностях и функциях члена школьного совета.

B. ВЫПОЛНЯЯ ДОЛЖНЫЕ ФУНКЦИИ ЧЛЕНА ШКОЛЬНОГО СОВЕТА, Я БУДУ:

1. Максимально сосредоточиться на политике в области образования.
2. Помните, что я отвечаю за установление политики, а не за ее реализацию.
3. Считаю себя попечителем государственного образования и делаю все возможное для защиты, сохранения и продвижения его прогресса.
4. Признать, что моя ответственность, осуществляемая через действия школьного совета в целом, состоит в том, чтобы следить за тем, чтобы школы функционировали должным образом, а не управлять ими самостоятельно.
5. Работайте через суперинтенданта, а не над суперинтендантом или вокруг него.
6. Делегировать реализацию решений школьного совета суперинтенданту.

C. ДЛЯ ПОДДЕРЖАНИЯ ОТНОШЕНИЙ С ДРУГИМИ ЧЛЕНАМИ ШКОЛЬНОГО СОВЕТА Я БУДУ:

1. Уважать права других иметь и выражать свое мнение.
2. Признать, что полномочия принадлежат школьному совету на судебном заседании, а не отдельным членам школьного совета, за исключением случаев, предусмотренных законом.
3. Не делайте пренебрежительных замечаний на собраниях школьного совета или вне его в отношении других членов школьного совета или их мнений.
4. Будьте готовы к тому, как я буду голосовать по любому предложению, пока правление не соберется и полностью не обсудит вопрос.
5. Принимайте решения путем голосования на собраниях школьного совета после того, как будут представлены все стороны спорных вопросов.
6. Настаивайте на том, чтобы комитеты назначались только в качестве консультантов школьного совета.

Д.ВЫПОЛНЯЯ СВОИ ОБЯЗАННОСТИ ПЕРЕД СООБЩЕСТВОМ, Я БУДУ:

1. Попытаться оценить и спланировать как настоящие, так и будущие образовательные потребности школьного округа и сообщества.
2. Попытка получить адекватную финансовую поддержку для программ школьного округа.
3. Настаивайте на том, чтобы деловые операции школьного округа были этичными и открытыми.
4. Стремиться выполнять свои обязанности и подотчетность перед налогоплательщиками моего школьного округа.

Э.РАБОТАЯ С РУКОВОДИТЕЛЕМ ШКОЛ И ПЕРСОНАЛОМ, Я БУДУ:

1. Считаю суперинтенданта ответственным за управление школьным округом.
2. Предоставьте суперинтенданту полномочия, соответствующие его или ее обязанностям.
3. Убедитесь, что школьный округ будет управляться лучшим профессиональным персоналом.
4. Учитывать рекомендации суперинтенданта при найме всех сотрудников.
5. Участвовать в деятельности школьного совета после рассмотрения рекомендации суперинтенданта и только после того, как суперинтендант предоставит адекватную информацию, подтверждающую рекомендацию.
6. Настаивайте на том, чтобы суперинтендант постоянно информировал школьный совет.
7. Дайте суперинтенданту совет и совет.
8. Признать статус суперинтенданта в качестве главного исполнительного директора и члена школьного совета без права голоса по должности.
9. Направлять все жалобы соответствующему административному сотруднику или настаивать на том, чтобы они были представлены в письменном виде всему школьному совету для надлежащего направления в соответствии с субординацией.
10. Любые личные критические замечания в адрес сотрудников направляйте суперинтенданту.
11. Оказывать поддержку суперинтенданту и сотрудникам школьного округа, чтобы они могли выполнять свои функции на профессиональном уровне.

F. ВЫПОЛНЯЯ СВОИ ЮРИДИЧЕСКИЕ ОБЯЗАННОСТИ КАК ЧЛЕНА ШКОЛЬНОГО СОВЕТА, Я БУДУ:

1. Соблюдать все федеральные, государственные и местные законы, касающиеся моей работы в качестве члена школьного совета.
2. Соблюдать все правила школьного округа, принятые школьным советом.
3. Соблюдать все правила и положения, установленные Министерством образования штата Миннесота и другими государственными и федеральными агентствами, в юрисдикции которых находятся школьные округа.
4. Признать, что дела школьного округа могут вестись на законных основаниях только на открытом заседании школьного совета.
5. Избегать конфликтов интересов и воздерживаться от использования моего положения в школьном совете в личных целях.
6. Не предпринимайте частных действий, которые могут скомпрометировать школьный совет или администрацию.
7. Обеспечьте конфиденциальность информации, которая защищена действующим законодательством.

Юридические ссылки:

• Миннесота.Стат. § 123B.02, Подд. 1 (Полномочия школьного округа)
• Minn. Stat. § 123B.09 (Полномочия школьного совета)
• Minn. Stat. § 123B.143, Subd. 1 (Суперинтендант)

Перекрестные ссылки:

• Руководство по обслуживанию MSBA, глава 1, Этический кодекс члена школьного совета/Приложение A, Кодекс поведения члена школьного совета : 14 сентября 2010 г.
  Пересмотрено: 21 декабря 2010 г.
  Пересмотрено: 5 мая 2015 г.

  Предотвращение заражения хряками в свиноводстве.Факторы, влияющие на уровень скатола | Acta Veterinaria Scandinavica

  Состав рациона

  Одним из важных инструментов управления микробной активностью и, таким образом, производством скатола в желудочно-кишечном тракте является состав рациона [4]. Несколько исследований предоставили доказательства того, что количество и тип белков и углеводов, присутствующих в корме, оказывает существенное влияние на обмен азота, тем самым влияя на образование скатола [5, 6]. В соответствии с этим было показано, что диеты, содержащие источник белка с низкой прецекальной перевариваемостью, стимулируют выработку скатола [7, 8], тогда как диеты с высоким содержанием ферментируемых углеводов, которые не перевариваются в тонкой кишке, снижают производство скатола, однако, результаты различаются.Øverland et al., [9] и Van Oeckel et al., [10] не обнаружили влияния диет, богатых сахарной мякотью, тогда как Jensen et al. [8], Kjeldsen [11], Knarreborg et al. [1] и Уиттингтон [12] наблюдали значительное снижение уровня скатола у свиней, получавших жом сахарной свеклы. Также было показано, что фруктоолигосахариды снижают выработку скатола как в моделях in vitro [13], так и в моделях in vivo [14, 2]. Также было показано, что сырой картофельный крахмал снижает выработку скатола [2, 15, 16]. В исследовании Дженсена и Дженсена [2] были исследованы семь различных источников клетчатки на предмет их влияния на снижение выработки скатола.Наиболее эффективными оказались сырой картофельный крахмал, фруктоолигосахариды и люпин (рис. 1).

  Рисунок 1

  Влияние различных источников пищевых волокон на концентрацию скатола в плазме крови. Рационы представляли собой: контрольный рацион на основе ячменя и сои (Cont), семь рационов с тем же базовым составом, что и контроль, но с добавлением 100 г/кг ^-1 либо сырого картофельного крахмала (PS), фруктоолигосахаридов ( FOS), люпин (LUP), ячменная шелуха (BHM), пальмовый жмых (PC), кокосовый жмых (CC) или сахарная пульпа (SBP).Все образцы крови брали через 3 часа после утреннего кормления. Контрольному рациону для каждого отдельного животного было присвоено значение 100, и другие рационы были связаны с ним. Значение для каждого источника клетчатки представляет собой три-четыре повтора с разными животными.

  Точный механизм того, как диеты, богатые клетчаткой, влияют на отложение скатола в шпике, неизвестен, но было представлено несколько противоречивых гипотез. Во-первых, при наличии дополнительных пищевых волокон в толстую кишку попадает больше непереваренного белка, что приводит к большему расщеплению триптофана до скатола.Во-вторых, большее количество ферментируемых углеводов в задней кишке повысит микробную активность в желудочно-кишечном тракте [17], что приведет к включению большего количества триптофана в виде бактериального белка, дальнейшее увеличение количества углеводов снизит активность протеолитических бактерий, что приведет к меньшему количеству триптофана, доступного для производства скатола. . В-третьих, дополнительные пищевые волокна приводят к более объемному материалу в толстой кишке и повышенной водосвязывающей способности, что приводит к разбавлению скатола, что приводит к меньшему контакту скатола со стенкой кишечника и, следовательно, к снижению всасывания скатола [2]. Кроме того, пищевые волокна уменьшают время кишечного транзита и, как таковые, могут уменьшать всасывание скатола из кишечника. Недавно было высказано предположение, что углеводы с высокой усвояемостью перед слепой кишкой увеличивают образование клеточного дебриса в тонком кишечнике, что приводит к поступлению большего количества триптофана в толстый кишечник и, как таковое, к более высокому образованию скатола [18]. С другой стороны, углеводы с низкой прецекальной усвояемостью будут снижать выработку скатола из-за повышенного производства бутирата, который ингибирует апоптоз, и, как таковой, меньше триптофана, доступного для производства скатола.

  То, что продукция скатола в задней кишке зависит от состава рациона, иллюстрируется серией экспериментов [19], в которых изучалась продукция скатола в задней кишке и всасывание скатола в портальную кровь после введения триптофана. вводили в слепую кишку свиней, получавших рацион с низким или высоким содержанием клетчатки. На рис. 2 показана картина абсорбции скатола в течение периода от 1 часа до и до 12 часов после введения либо триптофана, либо физиологического раствора.

  Рисунок 2

  Влияние пищевых волокон на абсорбцию (различия Vp-Vj) скатола в портальную кровь после введения триптофана (4,9 ммоль) или физиологического раствора в слепую кишку.Площадь под кривыми (AUC) представляет собой общее количество абсорбированного скатола. Оба рациона были схожими, за исключением того, что в рацион с высоким содержанием клетчатки добавляли 100 г жома сахарной свеклы на кг.

  Как эффект доступного триптофана, так и эффект клетчатки на скатол убедительны. При диете с низким содержанием клетчатки бактерии задней кишки превращают 26% введенного триптофана в скатол (таблица 1), что приводит к значительному увеличению концентрации скатола в портальной крови (рисунок 2).

  Таблица 1 Влияние пищевых волокон на микробную деградацию триптофана (TRP) до индола, индолпропионовой кислоты (IPA) и скатола в заднем кишечнике самцов свиней.

  Приблизительно 70% произведенного скатола обнаруживается в портальной крови. Однако на диете с высоким содержанием клетчатки только 6% введенного триптофана превращалось в скатол в желудочно-кишечном тракте, что приводило к меньшему увеличению концентрации скатола в портальной крови. Снова около 70% скатола, продуцируемого в задней кишке, всасывалось в портальную кровь. Также на базальную выработку скатола в задней кишке и всасывание в портальную кровь влияло содержание клетчатки в рационе.При диете с высоким содержанием клетчатки за 12 часов было произведено только 230 мкмоль скатола, в то время как при диете с низким содержанием клетчатки было произведено более чем в два раза больше (480 мкмоль). Эти результаты убедительно демонстрируют полезность измерений продукции скатола in vitro и использования портальной абсорбции для изучения влияния диеты на продукцию и абсорбцию микробных метаболитов в толстой кишке, а также подтверждают важное влияние состава диеты на количество скатол вырабатывается и всасывается из кишечника.Кроме того, результаты указывают на использование кормов, богатых клетчаткой, в качестве подходящего способа уменьшить запах хряка из-за скатола в практическом свиноводстве.

  Стратегии кормления

  Две стратегии кормления, оказывающие заметное влияние на экосистему желудочно-кишечного тракта, — это жидкое кормление [20] и структура корма (гранулы в сравнении с мукой/мелкозернистым в сравнении с утесником) [21]. Хотя было показано, что использование жидкого корма снижает уровень скатола [22], никогда не исследовалось, влияет ли состав корма на уровень скатола.

  Потребление корма (натощак)

  Исследования с разным уровнем кормления в период роста свиней показали, что общее потребление корма не влияло на уровень скатола, в то время как повторное кормление свиней в течение 12 часов перед убоем снижало уровень скатола [11]. Это согласуется с тем, что уменьшение количества перевариваемой пищи, поступающей в толстую кишку, приводит к более низкой ферментации непереваренного белка и очень быстрому расщеплению скатола в печени. Однако Андерсон и соавт.[22], не смогли подтвердить, что 12-часовая повторная раздача корма снижает содержание скатола.

  Факторы окружающей среды

  Уровень скатола зависит от условий окружающей среды [23], и было показано, что у свиней, выращенных в чистой среде, уровень скатола ниже, чем у свиней, выращенных в грязной среде [24].

  Половое созревание (возраст)

  Андростенон и другие тестикулярные стероиды могут влиять на уровень скатола путем регуляции метаболизма скатола в печени [16]. Андростенон представляет собой феромональный стероид, вырабатываемый в семенниках половозрелых самцов свиней вместе с другими стероидами, и его уровень в первую очередь зависит от стадии полового созревания.Используя эксперименты in vitro, Doran et al. [25] показали, что андростенон подавляет индукцию ферментов, участвующих в метаболизме скатола. Замарацкая и др. [16] обнаружили положительную корреляцию между тестикулярными гормонами тестостероном и сульфатом эстрона и уровнем скатола, предполагая, что эти соединения влияют на структуру скатола, и авторы предполагают, что убой целых самцов свиней весом менее 100 кг может быть использован для предотвращения запах кабана.

  Генетика

  Имеются убедительные доказательства генетического влияния на уровни скатола у свиней.К ним относятся различия в уровнях скатола между породами [26], значительные оценки наследуемости уровней скатола в жире [27], а также признаки наличия основного гена, влияющего на запах хряка из-за скатола [28].

  Семь кандидатов претендуют на место в окружном совете общественных служб Mountain House

  Энди Су является нынешним вице-президентом совета директоров с 2008 года. Он также основал Mountain House Flag Football в том же году, когда его впервые избрали.Находясь в совете директоров, Су проголосовал против повышения налогов за 11 из 12 лет своего пребывания в должности, увеличил продолжительность работы библиотеки Mountain House с 15 до 51 часа в неделю и сократил операционные расходы Mountain House за счет снижения арендной платы, реструктуризации штатных должностей. и смена поставщиков пожарных услуг.

  Три места выставлены на выборы в районный совет по коммунальным услугам Mountain House. Семь кандидатов, в том числе три действующих президента, баллотируются.

  Изображение предоставлено Окружным советом общественных служб Mountain House

  «Мне нравится, как вырос наш город, и я воодушевлен направлением, в котором мы движемся.», — написал он в своем предвыборном заявлении. Су также является врачом скорой помощи.

  Второй действующий президент, Бернис Кинг-Тингл, также входит в совет с 2008 года и является его нынешним президентом. Она также входит в состав правления регионального железнодорожного управления долины Три-Вэлли/Сан-Хоакин, которое курирует развитие железнодорожной системы ValleyLink.

  «Моя главная цель — обеспечить баланс между видением сообщества, бюджетом и приоритетами сообщества, сохраняя при этом баланс между качеством и финансовой ответственностью.», — говорится в ее предвыборном заявлении.

  Последним действующим президентом является Дэниел Харрисон, у которого заканчивается его первый четырехлетний срок. В настоящее время он также является членом Комитета общественной безопасности Mountain House. До своего избрания в 2016 году Харрисон проработал 28 лет в офисе шерифа округа Аламеда. В качестве ключевых вопросов он назвал развитие, обслуживание инфраструктуры, финансовую ответственность и общественную безопасность.

  Бросает вызов трем нынешним членам Гарри Диллон, местный авиационный бизнесмен и президент баскетбольного клуба Royal Kings.Он также является соучредителем Sikhs of Mountain House и уже второй год работает в Консультативном комитете по транспорту Mountain House. Приоритеты Диллона включают обеспечение налоговых поступлений для Mountain House и создание полиции и пожарных служб.

  Другим кандидатом является Пеббл (её полное официальное имя), страховой агент и член комитета по безопасности объединенного школьного округа Ламмерсвилля. Галька — еще один член-основатель Sikhs of Mountain House. В частности, она хотела бы настаивать на создании собственной пожарной части Mountain House.

  «Поскольку это поворотный момент в истории этого города, я баллотируюсь в правление CSD Mountain House, чтобы построить лучший Mountain House для нашего разнообразного сообщества», — написала она в заявлении своей кампании.

  Рагху Малапака, который в настоящее время занимается разработкой и производством биологических препаратов, также ищет место в совете директоров. Он также стал соучредителем отделения Kiwanis в Mountain House. Малапака надеется привлечь бизнес в Mountain House и создать спортивные сооружения.

  «Я знаю местный колорит и местное сообщество, и в то же время я доношу до сообщества глобальный взгляд», — сказал он. «Если вы занимаете должность восемь-десять лет, я думаю, вы воспринимаете это как должное. Нам нужны новые таланты и новое чувство безотлагательности, и это то, что я приношу», — сказал он в интервью Tracy Press.

  Последним кандидатом является Виктор Лью, исполнительный директор на пенсии, который безуспешно баллотировался в совет директоров в 2018 году. Он сказал, что планирует проводить ежеквартальные собрания, на которых жители могут услышать мнение своего начальника округа, департамента шерифа, местных подрядчиков и Mountain House. Средняя школа.

  Восьмой кандидат, Ронна Элейн Грин, также подала заявку на участие в выборах, но не прошла квалификацию.

  Факторы содержания хряков и обращения со спермой влияют на качество расширенной спермы хряков

  Abstract

  Искусственное осеменение (ИО) является предпочтительным методом воспроизводства в большинстве интенсивных систем свиноводства во всем мире. С этой целью свежая разбавленная, готовая к использованию сперма-доза либо закупается в центрах осеменения, либо производится хряками, содержащимися на ферме.Для прибыльного производства спермы необходимо получить максимальное количество высококачественной спермы от каждого хряка. В этом документе представлен обзор современных знаний о факторах, которые могут повлиять на качество спермы, воздействуя на хряка или сперму во время обработки.

  Генетические маркеры можно использовать для раннего выявления хряков с самым высоким потенциалом плодовитости. Генетический отбор для быстрого роста может поставить под угрозу качество спермы. Раннее выявление хряков, которые больше не пригодны для производства спермы, возможно с помощью ультразвукового исследования семенников.Сезонные колебания качества спермы могут быть связаны с изменениями фотопериода и теплового стресса летом. Очень важно иметь удобное жилье с подходящим материалом для подстилки, чтобы избежать проблем с передвижением. В некоторых районах могут потребоваться системы охлаждения, чтобы избежать теплового стресса. На качество спермы можно влиять с помощью стратегий кормления, направленных, например, на повышение устойчивости спермы к окислительному стрессу и увеличение срока хранения.

  Высокая частота сбора отрицательно влияет на качество спермы.Кроме того, если сбор спермы не проводится с соблюдением гигиенических норм, это приведет к бактериальному заражению доз спермы. Обеспокоенность по поводу бактериального заражения возросла не только из-за его негативного влияния на качество спермы, но и из-за обнаружения устойчивости к противомикробным препаратам в изолятах из расширенной спермы. Кроме того, необходимо контролировать бактериальные и вирусные патогены, поскольку они влияют на выработку и качество спермы и представляют риск заражения стада. Во время обработки сперма хряков подвергается воздействию многих стрессовых факторов, которые могут вызвать окислительный стресс и изменения, подобные капацитации, потенциально снижающие их фертильность.Скорость разбавления или температура разбавления влияют на качество доз спермы. Некоторые упаковки могут сохранять сперму лучше, чем другие, а некоторые пластиковые компоненты могут быть токсичными для сперматозоидов. Необходимы стандартные операционные процедуры и системы обеспечения качества в центрах искусственного интеллекта.

  Ключевые слова: Искусственное осеменение, Бактериоспермия, Хряк, Разведение, Управление, Сбор спермы, Качество спермы значительно возросло [1, 2]. По сравнению с естественным осеменением ИО снижает риск передачи болезней [3, 4], позволяет внедрять в стада свиноматок лучшие гены и, кроме того, приводит к большей рентабельности эякулята каждого хряка. Поэтому ИИ стал очень полезным инструментом в странах с интенсивным свиноводством. В Западной Европе более 90 % свиноматок разводятся с помощью искусственного осеменения уже более двух десятилетий [1, 2]. Сперму получают от хряков, находящихся либо на свинофермах, либо в специализированных центрах искусственного осеменения. Последние предлагают разнообразие пород и генетических линий, а также возможность распространения готовых к употреблению доз спермы неизменного качества.Для получения максимальной продуктивности от каждого хряка необходимо учитывать генетические и внешние факторы, которые могут повлиять на качество спермы и продуктивность.

  Отбор хряков с лучшим качеством спермы в раннем возрасте необходим для снижения затрат на выращивание животных, которые не будут использоваться для производства спермы [5]. Попав в производство, хряки, дающие сперму низкого качества, обычно помещаются на отдых на несколько недель и выбраковываются, если они не выздоравливают. Это влечет за собой дополнительные расходы для центров искусственного осеменения, поэтому они выиграют от метода раннего выявления хряков, подлежащих выбраковке [6].Некоторые морфологические маркеры могут быть использованы для выявления хряков с раннего возраста, которые будут производить высококачественную сперму, а также могут быть использованы для облегчения генетического улучшения за счет использования этих фенотипических различий для выбора наиболее совершенных генотипов [7]. Кроме того, при отборе хряков для искусственного осеменения необходимо учитывать не только параметры производства спермы, но и потенциал их потомства для производства мяса [8].

  Содержание, кормление и уход могут иметь прямое влияние на выход спермы [9–11] и, следовательно, на прибыльность центра искусственного осеменения.Во время обработки и хранения сперма подвергается стрессу, и считается, что некоторые стратегии кормления могут подготовить сперму к лучшему сопротивлению этому стрессу [12].

  Помимо ухода за хряками, с эякулятами необходимо обращаться контролируемым образом, чтобы избежать повреждения спермы. Все большее число центров искусственного интеллекта внедряют системы контроля качества, в которых контролируется каждый шаг от сбора до упаковки [13]. Известно, что температура разбавления и хранения или различные составы разбавителей влияют на качество спермы [14, 15].Бактериальное загрязнение было определено как одна из наиболее серьезных проблем при обработке свежей спермы [13]. Беспокойство вызывает не только негативное влияние бактерий на качество спермы, но и увеличение количества бактерий, выделенных из расширенной спермы, проявляющих устойчивость к антибиотикам [16].

  В настоящем документе будут рассмотрены и критически обсуждены различные этапы производства расширенной спермы свиней. Особое внимание будет уделяться факторам, которые могут поставить под угрозу качество спермы, таким как содержание хряков, бактериальное заражение, сбор, обработка и хранение спермы.

  Содержание хряков: факторы, влияющие на производство и качество спермы

  Важные факторы содержания хряков, влияющие на производство и качество спермы, приведены в Таблице .

  Таблица 1

  Таблица 1

  Коэффициенты, связанные с кабаном, влияющим на кабановое качество COREN Semen Качество

  1 / CORAW / ДЕНЬ ДОПОЛНЕНИЯ

  Детали	Детали	Ссылка	Ссылка
  Source
  Порода	Pietrain Дюрок против.Gl, lw, ys	Снижение сперматозоидов	[5]	[5]	[5]
  толщина задней части	толщина задней части жира в высокобрачке Piétrain	положительный ассоциация с мотоцитом	[8]
  Корпус
  Группа жилищные	Группы prepupebertal кабанов против отдельных	количества сперматозоидов высших	[45]
  Фотопериода	24 ч полного света или темноты в течение 3-х месяцев	уменьшенный объем и концентрация	[11]
  Тепловой стресс	34. 5 ° C (8 ч) или 31 ° C (16 ч) в течение 90 дней против 23 ° C	Уменьшенная моторика, уменьшенная морфология	[48]
  Nutrition
  Ограничение подачи	1,4 раза Ниже обслуживания	Снижение сперматозоидов	[51]	[51]
  Ограничение белка	12,0% неоднократный белок (CP) в производителях	Снижение сперматозоидов	[51]
  Selenium	0,06 PPM VS 0 .5 PPM непрерывно	снижение моторики, уменьшенная морфология	[56]	[56]	[56]	[56]	[56]
  	Улучшенная морфология в Piétrain	[61]	[61]	[61]
  Частота сбора	Дважды в день в течение 4 дней по сравнению с каждые 2 дня	снижение моторики и морфология	9]
  Коллекция ручка	ручка	ручка, позволяющая сексуальный стимул	более высокий спермы 04	[63]	[63]

  Генетика и отбор кабана

  Соответствующий выбор кабана имеет решающее значение и только кабаны с наилучшими чертами для производства спермы следует сохранить. Если отбор основан на качестве спермы, необходимо учитывать, что качество спермы хряков моложе 8 месяцев ниже, чем у хряков старшего возраста [5]. Таким образом, отбор хряков для искусственного осеменения в молодом возрасте на основании качества спермы может ввести в заблуждение. Необходимость ждать 8 месяцев отбора имеет тот недостаток, что замедляет скорость генетического улучшения. Кроме того, у хряков, выбракованных из-за плохого качества спермы, разовьется запах хряка, если только они не кастрированы, что приведет к снижению цены при забое. Было предложено вакцинировать хряков против гонадотропин-высвобождающего гормона (ГнРГ) однократной инъекцией в возрасте 16 недель без негативного влияния на качество спермы хряков в дальнейшем [17].Тем не менее, эту стратегию следует применять с осторожностью, потому что эта вакцинация при двукратном применении уменьшает размер яичек и может оказать негативное влияние на сперму хряка.

  Вес при рождении был предложен в качестве критерия для отбора хряков с наивысшим потенциалом в раннем возрасте [18, 19]. Похоже, что постпубертатные хряки имеют меньший размер семенников, когда у них был низкий вес при рождении (около 1 кг), по сравнению с хряками с высоким весом при рождении (около 2 кг). Однако качество спермы (подвижность, объем, концентрация, целостность ДНК и акросомы и морфология сперматозоидов), по-видимому, не зависит от массы тела при рождении.Отбор хряков можно проводить в более старшем возрасте (150 дней) на основании размера яичек, который, как было показано, положительно связан с общим количеством сперматозоидов в эякуляте, хотя не было связи с подвижностью, объемом или морфологией [20].

  По понятным причинам заказчику требуется сперма из генетических линий, которая даст потомство с хорошим потенциалом производства мяса, а значит, с хорошим ростом, эффективностью кормления и постным составом туши. Было высказано предположение, что отбор хряков для улучшения темпов роста может иметь негативное влияние на качество спермы, как это было описано для других видов, таких как куры или бельгийская голубая мясная порода с двойной мускулатурой [21, 22]. Недавно также было высказано предположение, что толщина шпика у тщательно отобранных хряков Пьетрен положительно связана с прогрессивной подвижностью [8]. Интересно, что в последнем исследовании связь жира на спине с общей подвижностью сперматозоидов, по-видимому, зависела от продолжительности хранения расширенной спермы. С 0-го по 2-й день хранения хряки с большим количеством жира на спине имели более высокую подвижность сперматозоидов, в то время как связь была отрицательной с 3-го по 4-й день, что свидетельствует об отрицательной связи жира на спине с устойчивостью спермы к хранению.Возможно, что эти фенотипические корреляции являются результатом косвенного отбора и взаимодействия между несколькими генами. Также было показано, что хряки линий, отобранных по скорости овуляции и объему матки, производят больше спермы по сравнению с не отобранными линиями [23]. Кроме того, кажется, что хряки пьетрен и дюрок имеют более низкое количество сперматозоидов, чем немецкие хряки ландрас, крупные белые и йоркширские хряки [5]. В том же исследовании наблюдались некоторые различия между породами по подвижности и морфологии, но различия были небольшими.Кажется более вероятным, что индивидуальная изменчивость превысит породную изменчивость.

  Помимо производства и качества спермы, было предложено исследовать генетические маркеры перед вводом хряков в производство. Такие маркеры могут относиться к молодому возрасту половой зрелости, более высокой устойчивости к тепловому стрессу или лучшему сохранению качества спермы при хранении в жидком или замороженном виде [7]. Например, аномалии сперматозоидов у финских йоркширских хряков, такие как выпуклая акросома, остановка сперматогенеза или дефект неподвижного хвоста сперматозоидов, по-видимому, имеют генетическое происхождение.Некоторые гены-кандидаты были предложены в качестве причины, предполагая, что генетический отбор хряков может предотвратить наличие этих дефектов в сперме потомства [24–26]. Недавно в качестве маркера, связанного с подвижностью сперматозоидов, был предложен митохондриальный ген метионил-тРНК формилтрансферазы [27].

  Патологии половых органов и инфекционные патогены, влияющие на здоровье хряков

  Обследование хряков, выбракованных на бойнях из-за проблем с фертильностью, выявило различные патологии яичек, такие как варикоцеле, фиброз, воспаление или кровоизлияния, при этом варикоцеле является наиболее частым признаком [28].Кроме того, у хряков были описаны некоторые опухоли (например, гемангиома или опухоль из клеток Сертоли), которые могут приводить к ухудшению качества спермы [29]. Центры искусственного осеменения хряков выиграют от метода раннего выявления этих заболеваний, т.е. при ультразвуковом исследовании мошонки и яичек [6]. Не следует использовать сперму хряков с односторонним крипторхизмом, поскольку это ухудшит качество, а также выработку спермы в мошонке яичка [30]. Дисфункция придатка яичка, по-видимому, приводит к высокой частоте сперматозоидов с одиночными изогнутыми хвостами и низкой подвижностью [31].

  Инфекционные заболевания также могут ухудшить качество спермы. Brucella suis, лептоспиры и Chlamydia sp. [32, 33] — бактерии, негативно влияющие на качество спермы. В тропическом климате трипаносомы [34] могут нарушать сперматогенез. Некоторые вирусные агенты также могут влиять на качество и выработку спермы, как было недавно рассмотрено [4]. Вирус японского энцефалита вызывает орхит, который приводит к снижению количества и подвижности сперматозоидов и увеличению аномалий сперматозоидов [35]. Вирус болезни Ауезского вызывает дегенерацию яичек и увеличивает аномалии спермы [36].Вирус репродуктивно-респираторного синдрома свиней (PRRSv) не вызывает специфических поражений в семенниках, но заражение вирусом может привести к аномалиям сперматозоидов, снижению подвижности и уменьшению объема эякулята из-за прямого влияния репликации вируса в сперматогенном эпителии [37, 38]. Шульц и др. [37] обнаружили, что некоторые параметры компьютерного анализа спермы (CASA) (увеличение ALH и снижение линейности) изменились после инфицирования вирусом РРСС, и предложили использовать рутинный мониторинг этих параметров в качестве первого признака вспышки вируса РРСС [37] Эпидидимит, орхит и постоянное или временное бесплодие, усиление аномалий или азооспермия наблюдались после искусственного заражения хряков рубулавирусом (синий глаз) [39]. Энтеровирусная инфекция свиней пикорнавирусом может привести к семенным везикулитам, снижению либидо и другим аномалиям спермы. Совсем недавно было исследовано влияние кишечных паразитов на качество спермы. Значимой связи между паразитарной инфекцией, измеряемой количеством яиц/г фекалий, и качеством спермы не было продемонстрировано [40]. В последнем исследовании, по-видимому, наблюдался эффект режима дегельминтизации на общее количество сперматозоидов. Наибольшее количество сперматозоидов было обнаружено в тех центрах ИО, которые не лечили от кишечных гельминтов, по сравнению с центрами ИО, проводившими дегельминтизацию либо только в карантине, либо и в карантине, и в процессе производства макроциклическими лактонами или бензимидазолами в различных сочетаниях.Эти результаты трудно оценить, потому что в статистические модели этого эпидемиологического исследования было включено множество различных переменных. Рандомизированное контролируемое исследование влияния различных средств для дегельминтизации на качество спермы могло бы дать более четкие результаты.

  Вакцинация против некоторых болезней может защитить хряков от заражения и контроля или предотвращения передачи. Вакцинация против парвовируса, вируса РРСС или цирковируса свиней типа 2 может помочь уменьшить выделение вируса после заражения [41, 42].Помимо их влияния на выделение вируса, влияние различных вакцин на качество спермы подробно не исследовалось. Сперма хряков, вакцинированных модифицированной живой вакциной против вируса РРСС и впоследствии зараженных вирусом, имела худшую подвижность и морфологию, чем у зараженных, но не вакцинированных хряков [41]. Как упоминалось ранее в этом разделе, РРСС реплицируется в сперматогенном эпителии [38], и поэтому возможно, что живой вирус вакцины может иметь аналогичный эффект.Модифицированные живые вакцины против РРСС зарегистрированы в Европе для использования только у поросят и свиноматок, поэтому их влияние на качество спермы подробно не исследовалось. Совсем недавно сообщалось, что вакцинация против ЦВС-2 адъювантной вакциной на масляной основе вызывает лихорадку и вялость, что может привести к снижению качества спермы [43]. Однако это нежелательное явление наблюдалось только у одного из четырех хряков, что затрудняет вывод о безопасности вакцин на масляной основе для применения у хряков.

  Содержание хряков и стабильные климатические условия

  В соответствии с европейским законодательством (Директива Комиссии 2001/93/ЕС) на одного хряка должно приходиться не менее 6 м ² сплошной площади пола; жилище должно позволять кабану поворачиваться и слышать, обонять и видеть других кабанов. Тип содержания взрослых хряков может влиять на здоровье хряков и косвенно влиять на качество спермы из-за бактериального заражения [44]. При наличии подстилки остатки подстилки на брюшной части хряка следует удалить перед сбором спермы, чтобы избежать бактериального загрязнения эякулята [44].

  Содержание молодых хряков также влияет на производство спермы. Было показано, что групповое содержание растущих хряков благотворно влияет на последующую репродуктивную функцию. Группы из 8 хряков содержались в загонах 4 м × 4,3 м с массой тела 30 кг до успешного завершения двух осеменений (примерно 6-месячный возраст), имели в среднем более сильные ноги для осеменения, более высокое либидо, более раннее совершение первой случки и более высокую количество сперматозоидов по сравнению с хряками, содержащимися индивидуально [45].

  Помимо соответствующей конструкции загона, окружающая среда также должна быть адаптирована к потребностям хряков.Влияние различных световых режимов, температуры, влажности и сезонных эффектов на качество спермы изучалось в различных исследованиях. Роль светового режима на качество спермы неоднозначна. Хряки, которых содержали при естественном освещении плюс искусственное освещение (10–500 люксов) для поддержания постоянного 15 часов света в день с 11-недельного возраста до полового созревания (24–26 недель), имели более быстрое половое созревание и более высокое либидо, чем хряки, получавшие только естественный свет в течение этого периода (от 15 часов в 11 недель до 9 часов в конце испытания) [46].Однако поддержание постоянного 15-часового освещения не повлияло на качество спермы. Продолжительность воздействия света, по-видимому, влияет на качество спермы в экстремальных условиях, как показало недавнее исследование, в котором взрослых хряков подвергали либо 24-часовому искусственному освещению, либо 24-часовому полному мраку в течение 3 месяцев. Эти экстремальные режимы оказали негативное влияние на объем и концентрацию спермы, особенно когда хряков помещали в полную темноту по сравнению с 12 часами [11]. В последнем исследовании наблюдалось снижение объема и концентрации спермы после 1 месяца пребывания на 24-часовом свете или в полной темноте, но через 3 месяца объем и концентрация спермы вернулись к значениям до лечения.Авторы предположили, что кабаны смогли адаптироваться к этим экстремальным фотопериодам. Однако, как и в других исследованиях, фотопериод не влиял на подвижность или жизнеспособность сперматозоидов [46, 47].

  Тепловой стресс также влияет на качество спермы хряков. У хряков, подвергавшихся воздействию 34,5 °C в течение 8 часов и 31,0 °C в течение 16 часов ежедневно в течение 90 дней, подвижность и морфология сперматозоидов были ниже, а также снижена фертильность по сравнению с контрольными хряками, которых содержали при 23,0 °C [48]. Похоже также, что материнские чистопородные линии более чувствительны к более высоким температурам [49]. Более того, не только постоянный тепловой стресс, но и колебания температуры более чем на 10 °C (25–35 °C) между днем ​​и ночью, а также влажность более 90 % могут снижать выработку сперматозоидов [50].

  Насколько нам известно, не проводилось исследований влияния качества воздуха, фильтрации воздуха, концентрации аммиака или других газов на качество спермы хряков или других животных, но кажется очевидным, что хорошее качество воздуха необходимо для комфорта и благополучия хряков. кабан.

  Корм ​​для хряков

  Анализ пищевых потребностей хряков показал, что только резкое ограничение кормления, т.е.е. уровни корма ниже 1,4-кратного поддерживающего, оказывают негативное влияние на выход спермы и/или либидо, но, по-видимому, не влияют на подвижность или жизнеспособность сперматозоидов [51].

  Что касается потребления корма и энергии, кажется, что только серьезный дефицит белка в рационе повлияет на либидо хряка и выход спермы, но не на качество спермы [51]. Соответствующий уровень белка в корме для хряков в производстве является спорным и основан на более старых данных. Совсем недавно было показано, что при кормлении хряков рационом с низким содержанием белка (13%), увеличение соотношения треонин:триптофан:аргинин в содержании белка улучшит качество спермы хряков [10].

  Многие исследования были посвящены различным кормовым добавкам в кормах для хряков. Особое внимание уделяется антиоксидантам, так как считается, что одной из основных причин повреждения сперматозоидов при хранении в жидкости является перекисное окисление липидов мембраны сперматозоидов [52]. Различные исследования показали, что липидный состав спермы может быть изменен путем добавления в корм n-3 полиненасыщенных жирных кислот (ПНЖК) [12, 53]. Однако вопрос о том, влияет ли добавление ПНЖК в корм на устойчивость сперматозоидов к хранению, остается спорным.В одном исследовании добавление масла тунца (30 г масла тунца на кг рациона) в течение 6 недель улучшало подвижность сперматозоидов, целостность акросом и их морфологию [53]. Напротив, не было обнаружено влияния добавок с маслом тунца (60 г/кабан/день) в течение 6 месяцев на жизнеспособность сперматозоидов, подвижность, целостность акросом, восприимчивость к перекисному окислению и фрагментации ДНК или на количество спермы по сравнению с добавками гидрогенизированного животного жира. (62 г/кабан/день) или менхаденовое масло (60 г/кабан/день) [12]. Селен (Se) привлек большое внимание из-за его антиоксидантных свойств в качестве структурного компонента глутатионпероксидазы (GPx), фермента, присутствующего в сперме хряка, который защищает клеточные и субклеточные мембраны от перекисного окисления [54, 55].У хряков добавление к основному рациону, содержащему 0,06 частей на миллион Se, с 0,5 частей на миллион Se от отъема до 9-месячного возраста приводило к более высокой подвижности сперматозоидов и меньшему количеству аномальных сперматозоидов, чем у хряков, получавших основной рацион без добавок [56]. В последнем исследовании более высокие коэффициенты оплодотворяемости наблюдались у свинок, осемененных спермой хряков, получавших корм с добавками селена. Кроме того, форма (неорганическая или органическая), в которой Se дается хрякам, может влиять на качество спермы, хотя результаты противоречивы.Мы показали, что замена неорганического селена на органический в рационе взрослых хряков увеличивает концентрацию сперматозоидов, но снижает прямую подвижность и устойчивость к окислительному стрессу [57]. Последующие исследования не обнаружили различий в качестве спермы хряков, получавших органический или неорганический селен [58, 59]. Также недавно было обнаружено больше GPx у хряков, получавших органический Se, но не наблюдалось влияния на качество спермы [60].

  Была исследована связь между такими витаминами, как L-карнитин или витамин Е, и качеством спермы.Добавка L-карнитина (625 мг на хряка/день) увеличивала количество зрелых сперматозоидов в эякуляте хряков Пьетрен при увеличении фотопериода и температуры, но этот положительный эффект не наблюдался у хряков дюрок и крупных белых хряков [61]. Витамин Е работает вместе с селеном для защиты сперматозоидов от перекисного окисления липидов, а дефицит этого витамина в корме может привести к снижению подвижности и более аномальным сперматозоидам [56]. В другом исследовании добавление смеси различных жиро- и водорастворимых витаминов не уменьшило отрицательное влияние высокой частоты сбора спермы на производство или качество спермы [62].

  Загон для сбора и частота сбора

  Как и загон для содержания, загон для сбора должен быть безопасным для хряков и сотрудников и должен позволять быстро перерабатывать большое количество хряков [63]. Недавно была разработана автоматизация линии сбора, позволяющая осуществлять сбор почти без помощи рук [64]. Эта система включает в себя, среди прочего, пневматическое открывание смотровых люков и электронную идентификацию коллектора и хряка, и было доказано, что она увеличивает количество хряков, обрабатываемых одним коллектором в час, без снижения производства спермы (концентрация и объем).Различные производители автоматизированных систем сбора спермы заявляют о снижении бактериального загрязнения. Вопрос о том, влияют ли эти автоматизированные системы на качество спермы, гигиену или загрязнение эякулята, заслуживает дальнейшего изучения.

  Конструкция загона также влияет на половое поведение хряка [63]. Кабаны, у которых есть сексуальный стимул, быстрее завершают сбор, что приводит к обработке большего количества хряков за более короткий период времени. Кроме того, у этих хряков, по-видимому, больше сперматозоидов [63, 65].Кабанов можно сексуально стимулировать непосредственно перед сбором, позволяя им увидеть других кабанов в действии с манекеном. Это возможно, когда перед загоном для сбора доступна так называемая зона разогрева. Также изучалась стимуляция хряков простагландинами (PGF2α), но, кроме тенденции к сокращению времени до начала эякуляции и большей продолжительности эякуляции, не наблюдалось никакого влияния на количество сперматозоидов или качество спермы [66].

  Отсутствие гигиены во время сбора приведет к бактериальному и вирусному заражению эякулята, а затем и доз спермы [44, 67, 68].Кроме того, волосы вокруг препуциального отверстия необходимо регулярно подстригать, поскольку это может привести к бактериальному заражению [44]. Бактериальное загрязнение может вызвать снижение качества спермы в результате прямого воздействия бактерий или косвенного действия побочных продуктов бактерий на сперму [69, 70].

  Как правило, сперму хряков в центрах осеменения собирают примерно два раза в неделю [1]. Известно, что высокая частота забора отрицательно влияет на морфологию и подвижность сперматозоидов, поскольку сперматозоиды вынуждены быстро проходить от головки к каудальному отделу придатка яичка, не имея времени для созревания придатка яичка [9, 71].У хряков, отбираемых два раза в день в течение четырех дней подряд, было больше проксимальных капель, больше аномалий головы и хвоста и более низкая подвижность, чем у контрольных хряков, отбираемых один раз через день в тот же период [9]. Через 4 дня сбора подвижность эякулята хряков, подвергшихся высокочастотному сбору, не превышала 20%. Авторы последнего исследования предположили, что высокая частота сбора приводит к дисбалансу секреции жидкости в придатке яичка, что необходимо для созревания сперматозоидов.

  Бактериальное загрязнение

  Известно, что бактериальное загрязнение ухудшает качество спермы, поскольку вызывает агглютинацию сперматозоидов и снижает подвижность [67]. Это также может снизить продолжительность жизни сперматозоидов во время хранения и их потенциал фертильности [69, 70, 72]. Бактерии, обычно выделяемые из разлитой спермы, и их влияние на качество спермы представлены в таблице.

  Таблица 2

  Процент загрязненных расширенных образцов спермы ^a , в которых были выделены различные бактерии, и их влияние на качество спермы

  Бактерии	Althouse and Lu.[67]	Schulze et al., [13]	Úbeda et al. [28]	Эффект на сперму
  % Conatmined образцов (N / Total образцы)	31,2% (78/250)	25,6% (88/344)	14,7% (263/1785 )	Снижение качества спермы
  Ахромобактер ксилосоксиданс	10,3%	3,4%	ND	Агглютинация, плохая подвижность, поврежденные акросомы, кислый рН [44]
  Burkholderia cepacia	2. 6%	ND	ND	Агглютинация, плохая подвижность, поврежденные акросомы, кислый pH [44]
  Clostridium perfringens	ND	ND	ND	Плохая жизнеспособность и подвижность сперматозоидов [72]
  Enterobacter cloacae	2,6%	13,6%	ND	Агглютинация, плохая подвижность, поврежденные акросомы, кислый рН, снижение осмотической резистентности [44; 74]
  Enterococcus spp.	20,5%	8%	НО	НО
  Кишечная палочка	6,4%	ND	1,5%	Агглютинация, плохая подвижность, повреждение акросом [44]
  Klebsiella spp.	3,8%	8%	11,8%	Плохая подвижность [28]
  Лейфсония водная	Нет данных	20,5%	Нет данных	Нет данных
  Морганелла моргании	НД	НД	3.8%	Плохая подвижность, повреждение акросомы, плохой ответ на тест гипоосмотического набухания [28]
  Протей чудесный	1,3%	5,7%	1,9%	плохая моторика, аномальные формы [28]
  Провиденсия spp.	3,8%	Нет данных	9,1%	Нет данных
  Pseudomonas spp.	6,4%	5,7%	НД	С.aureaginosa снижение общей и прогрессивной подвижности сперматозоидов, жизнеспособности сперматозоидов и целостности акросом
  Ralstonia pickettii	Нет данных	11,4%	Нет данных	Нет данных
  Stenotrophomonas maltophilia	15,4%	ND	ND	Агглютинация, плохая подвижность, поврежденные акросомы
  Серратия marcescens	10,3%	2. 3%	12,5%	Агглютинация, плохая подвижность, поврежденные акросомы, кислый рН [44]

  Многие различные бактерии были выделены как из сырой спермы, так и из расширенных доз спермы [16, 44]. В основном они принадлежат к семейству Enterobacteriaceae [67, 73]. Было продемонстрировано, что в этом семействе Serratia marcenses , Klebsiella oxytoca , Morganella morganii или Proteus mirabilis присутствуют в большом проценте образцов, и их присутствие связано со сниженной подвижностью [73]. Enterobacter cloacae при соотношении сперма:бактерии 1:5 и 1:10 снижали подвижность сперматозоидов и целостность мембран и приводили к агглютинации сперматозоидов в дозах спермы, хранившихся при 15–17 °C [74]. Clostridium perfringens снижал подвижность и жизнеспособность сперматозоидов после инокуляции 10 ⁸ КОЕ/мл в дозах спермы и 24-часовой инкубации при 37° или хранении при 15°C [72]. Аналогичным образом, экспериментальное заражение 2 × 10 ⁷ или 2 × 10 ⁸ КОЕ/мл Pseudomonas aeruginosa хранящейся спермы хряка привело к значительному снижению процента общей и прогрессивной подвижности сперматозоидов, жизнеспособности сперматозоидов и целостности акросом. , но не влиял на рН [70].В исследовании Althouse et al. [44], 80 мл (3,5 x 10 ⁹ общего количества сперматозоидов/доза) расширенных образцов спермы инокулировали от 10 до 15 колоний чистых культур шести наиболее часто выделяемых бактерий ( Enterobacter cloacae, Escherichia coli, Serratia marcescens, Alcaligenes xylosoxidans, Burkholderia cepacia, Stenotrophomonas maltophilia ). Для всех изолятов после инокуляции в зависимости от времени наблюдалось визуальное слипание, микроскопическая агглютинация сперматозоидов (> 25% сперматозоидов), плохая подвижность и поврежденные акросомы.Точные взаимодействия различных бактерий со спермой еще полностью не изучены. Совсем недавно было высказано предположение, что Pseudomonas aeruginosa снижает способность сперматозоидов к капацитации [75]. В последнем исследовании было обнаружено, что инокуляция сперматозоидов 10 ⁶ или 10 ⁸ КОЕ/мл Pseudomonas aeruginosa в среде капацитации , приводит к увеличению количества сперматозоидов с повреждением мембраны и снижению подвижности сперматозоидов. а также снижение уровней фосфотирозина р32, последнее является известным маркером достижения капацитации in vitro.Факторы риска бактериального заражения во время сбора включают просачивание препуциальной жидкости из рук техника и сбор более 7 минут [68]. Количество КОЕ также было выше, когда у хряков была длинная препуциальная шерсть. Кроме того, также были исследованы гигиенические критические контрольные точки при обработке спермы в лаборатории [13]. Было обнаружено, что виды, культивированные из контаминированной разлитой спермы, отличались от видов, выделенных из сырого эякулята, что указывает на то, что большая часть контаминации дозы спермы происходит из лабораторной среды, а не от хряков. Раковины или стоки показали высокую контаминацию, и в различных точках производства было выделено множество бактерий с множественной лекарственной устойчивостью. Контроль и обеспечение надлежащей гигиены в этих критических точках приведет к снижению количества бактерий и улучшению качества спермы [16].

  Обращение с эякулятом: Факторы при обращении со спермой

  Различные факторы, влияющие на качество спермы при обращении со спермой, были исследованы в последние годы и обобщены в таблице.Внедрение систем контроля и обеспечения качества в центрах искусственного осеменения поможет уменьшить негативное влияние этих факторов на качество спермы.

  Таблица 3

  спермы обработки факторов, влияющих на кабановое качество

  1 Нижняя подвижность

  фактор	Детали	Эффект качества	Ссылка
  Коллекция	Латексные перчатки.	Токсичность для спермы		[76]	[76]
  	Предредительная жидкость в контейнер для сбора	Увеличивает бактериозпермию	[68]	[68]	[68]
  	Коллекция длиннее 7 мин,	увеличивает бактериозма [68]
  Разведение
  Температура	Окончательное разведение при 22 °C и 30 °C (двухэтапное разведение)	Отсутствие различий в подвижности сперматозоидов, морфологии или целостности акросом после 3 041 дней хранения [9041 дней хранения 4 14]
  	Окончательное разведение при 20 °C по сравнению с 32 °C (2-этапное разведение)	Нет различий в целостности мембраны или реакции на условия капацитации 21 °C по сравнению с 32 °C (2-ступенчатое разведение)	Меньшая подвижность, повышенное повреждение мембран после 6 дней хранения	[80]
  Степень разбавления	0. 5 × 10 9 SPERM / 80 ML VS 2.5 × 10 9 /80 ML	[83]	[83]	[83]	[83]
  Складские носители	короткие против длинные	Нижняя мотоцификация после 4 дней хранения	[15] A
  	Намагничиваемый удлинитель	Улучшить целостность мембраны	[88]	[88]
  	Предотвращение бактерий	[92]
  Упаковка	Сумки VS трубы.	Нужно меньше времени достичь 17 ° C	[96]	[96]	[96]	[96]
  	Некоторые пластиковые соединения	Токсичные для спермы	[97]	[97]
  Хранение
  температура	<12 ° C	<12 ° C	<12 ° C	Снижение моторики спермы и жизнеспособности	[78]
  Продолжительность	> 4 дня	[15, 86]	[15, 86]	[15, 86]
  Air Contact	Воздушный контакт при хранении	Увеличение рН, снижение подвижности сперматозоидов	[101]
  Дозы поворота	Вращение на 180°/12 ч или пять вращений на 360°/ч по сравнению сневращающиеся пробирки с использованием	Повышение pH, снижение подвижности сперматозоидов	[102]

  Сбор спермы

  Сбор спермы в центрах искусственного осеменения обычно выполняется руками в перчатках [1]. Можно использовать поливиниловые перчатки; латексных перчаток следует избегать, так как они токсичны для спермы [76]. Быстрое охлаждение может привести к повреждению спермы, поэтому используется предварительно нагретый (38 °C) контейнер для сбора [77]. Более того, сбор спермы был определен как наиболее критическая точка для бактериального заражения [68].Первую часть эякулята (~ 25 мл) следует выбросить, поскольку она не содержит сперматозоидов и может содержать большое количество бактерий [68]. Затем собирают богатую спермой фракцию (40–100 мл), которая содержит 80–90% всех сперматозоидов в эякуляте. Как только богатая спермой фракция полностью собрана, оставшаяся часть эякулята снова представляет собой более прозрачную водянистую жидкость, которую не нужно собирать, поскольку она содержит мало сперматозоидов и в основном представляет собой секрет везикул, предстательной железы и, ближе к концу эякуляции, бульбоуретральные железы.

  Процедуры разведения

  После эякуляции подвижность и жизнеспособность сперматозоидов сохраняются только в течение нескольких часов. Чтобы избежать раннего истощения и продлить выживаемость сперматозоидов, их метаболическая активность должна быть снижена с помощью химических ингибиторов и/или понижением температуры, и, следовательно, эякулят необходимо увеличить вскоре после сбора. По сравнению со спермой других видов животных сперма хряка очень чувствительна к температурам ниже 12 °C из-за более низкой доли ПНЖК в ее мембране [78, 79].Эта температура обычно не достигается во время обработки спермы, где температура контролируется. Температура эякулята в момент сбора составляет примерно 37 °С и составляет 32–35 °С по прибытии в лабораторию, где он обрабатывается [80]. В большинстве центров искусственного осеменения используется двухэтапное разведение, при котором сперма сначала разводится (1:1) предварительно нагретым разбавителем (~33 °C), а затем разбавляется либо предварительно нагретым разбавителем, либо разбавителем, хранящимся при комнатной температуре [1, 80]. Однако протоколы разбавления и температура разбавителя для каждого разведения различаются в разных центрах ИО [1]. Было высказано предположение, что акклиматизация при 30 °C в течение нескольких часов оказывает защитное действие на образцы, хранящиеся при 17 °C [81]. Однако Петрункина и соавт. [82] показали отрицательный эффект акклиматизации при 32 °C по сравнению с разбавлением при 20 °C, основываясь на реакции in vitro на анализы капацитации. Они утверждали, что, сохраняя сперму ближе к физиологической температуре, сперматозоиды не снижают свой метаболизм, что приводит к изменениям, которые в противном случае ухудшили бы качество спермы. Лопес Родригес и др. [14] показали, что при двухступенчатом разведении предварительный нагрев разбавителя для второго разведения до температуры спермы не улучшал подвижность, жизнеспособность или целостность акросомы по сравнению с разбавлением при умеренной комнатной температуре (22–23 °C). ).Напротив, Шульце и соавт. [80] обнаружили более низкую подвижность и большее повреждение мембран у сперматозоидов, разбавленных при 21 °C, по сравнению с 32 °C в протоколе двухэтапного разведения. Однако в последнем исследовании большинство различий стало очевидным только после 6 дней хранения, поэтому оно, вероятно, не имеет большого коммерческого значения. При сравнении обоих исследований стоит отметить, что в исследовании Lopez Rodriguez et al. [14], образцы исследовались в течение всего 3 дней, что является обычно используемой продолжительностью хранения на ферме. Хотя in vitro не было обнаружено явного влияния температуры разбавления на качество спермы, необходимы исследования in vivo, уточняющие влияние температуры разбавления на фертильность спермы хряка, чтобы подтвердить, что сперма, разбавленная при разных температурах, не теряет своей способности оплодотворять яйцеклетку.

  Кроме того, скорость разбавления влияет на качество спермы во время хранения. Высокое разведение (0,5 × 10 ⁹ сперматозоидов/80 мл или 1 × 10 ⁹ сперматозоидов/80 мл) приводило к меньшей подвижности сперматозоидов при хранении по сравнению с более низким разведением (2,5 × 10 ⁹ сперматозоидов/80 мл), но добавление семенной плазмы может смягчить этот негативный эффект [83].

  Среда для хранения

  Среда, используемая для хранения жидкости, необходима для продления жизни сперматозоидов за счет обеспечения клеток энергией, буферизации pH суспензии и предотвращения роста бактерий [15].Доступно множество различных разбавителей спермы хряка для кратковременного или длительного хранения, требующих защиты [15]. Разбавители длительного действия помимо бикарбонатной буферной системы содержат более сложные буферные системы (HEPES, Tris), а также бычий сывороточный альбумин [78, 84]. Последний оказывает положительное влияние на выживаемость сперматозоидов за счет поглощения продуктов метаболизма бактерий из наполнителя [85]. Согласно исследованиям in vitro и in vivo, большинство имеющихся на рынке разбавителей обеспечивают приемлемую защиту жизнеспособности сперматозоидов в течение первых 72 часов хранения, хотя подвижность и фертильность снижаются при хранении спермы более 4 дней [15, 86].

  Концентраты разбавителей обычно разбавляют дистиллированной или деионизированной водой. Важно не только микробиологическое качество воды, но и содержание электролитов, особенно отсутствие ионов кальция. Недавно было показано, что намагниченный наполнитель улучшает целостность мембраны за счет снижения перекисного окисления [87, 88]. Было высказано предположение, что намагничивание воды повысит электронодонорную способность разбавителя спермы, что может снизить уровень свободных радикалов и активных форм кислорода.Однако полезные эффекты намагниченной воды наблюдались только в образцах, хранившихся в течение 120 часов или 168 часов, тогда как дозы спермы обычно используются в течение 72 часов.

  Гормональные добавки к дозам ИИ были предложены для улучшения фертильности. Добавление окситоцина к дозам искусственного осеменения улучшило скорость опороса в летние месяцы в Испании [89]. Другое исследование показало, что добавление эстрогенов, простагландина F2α (PGF2α) и окситоцина к дозам ИИ не улучшало частоту наступления беременности, но увеличивало общее количество плодов [90]. Не наблюдалось улучшения подвижности сперматозоидов при добавлении PGF2α (2,5, 5 или 10 мг динопростума) к 100 мл разбавленной свиной спермы [91]. Эти гормоны, по-видимому, не влияют на качество спермы, и их влияние на фертильность свиноматок трудно определить, учитывая множество факторов, влияющих на репродуктивную способность.

  Поскольку в расширенной сперме хряка присутствует бактериальное загрязнение, обычно добавляют антибиотики для предотвращения чрезмерного роста бактерий и уменьшения действия бактериальных токсинов [92].В контексте разумного использования противомикробных препаратов меньшее использование противомикробных препаратов в разбавленной сперме может помочь снизить устойчивость к противомикробным препаратам. В этом отношении однослойное центрифугирование эякулята хряка может снизить концентрацию бактерий и, следовательно, уменьшить потребность в антибиотиках в разбавителях спермы [93]. Хотя этот процесс, по-видимому, не влияет на общую подвижность, он, по-видимому, увеличивает линейность движения сперматозоидов. Его влияние на качество спермы и фертильность сперматозоидов заслуживает дальнейшего изучения.Добавление выбранного циклического гексапептида было предложено в качестве замены антибиотиков в разбавителях, но потенциал этих пептидов все еще исследуется [94].

  Упаковка и хранение

  После завершения разбавления разбавленную сперму упаковывают в дозах по 80–100 мл для хранения и распределения. Дозы обычно содержат 2–3 миллиарда сперматозоидов. Однако в последние годы были разработаны новые методы (например, внутриматочная инсеминация), позволяющие проводить инсеминацию меньшего количества сперматозоидов в меньшем объеме [95].

  Процесс упаковки осуществляется автоматизированными системами в большинстве центров ИИ. Эти системы работают быстро и точно и не могут повредить сперму. Различные контейнеры, такие как пластиковые бутылки, блистеры, пробирки или складная мембрана со встроенным катетером, могут использоваться для хранения, доставки и осеменения расширенных доз спермы [1]. Было показано, что тип контейнера будет влиять на скорость охлаждения, и кажется, что пакетам требуется меньше времени для достижения 17 °C по сравнению с пробирками [96]. Кроме того, пластиковые соединения в различных упаковках должны быть исследованы в случаях снижения качества спермы, поскольку они могут быть токсичными для сперматозоидов [97].Последнее исследование было первым отчетом, связывающим репродуктивную недостаточность у свиноматок со снижением качества спермы, вызванным наличием циклического лактона и диглицидилового эфира бисфенола А (BADGE) в упаковках для спермы. Они подтвердили эту связь in vivo, добавив эти два химических вещества в сперму и осеменив две группы по 50 свиноматок смесью или контролем. Добавление циклического лактона и BADGE было связано со снижением фертильности (58% против 84% у контрольных свиноматок). Интересно, что добавление этих химических веществ в сперму не вызывало повреждения сперматозоидов, которое можно было бы наблюдать при обычных анализах качества спермы, таких как функциональность мембран, аномальная морфология, концентрация, подвижность сперматозоидов и статус акросом. Поэтому анализы на родственные токсины должны быть включены в рутинный контроль качества компаний, поставляющих сперму для искусственного осеменения.

  Сперму можно инкапсулировать в альгинат бария, чтобы защитить сперму от повреждения во время обработки. Концентрация в каждой капсуле зависит от эякулята, и осеменение производится обычным способом, что дает хорошие результаты в отношении фертильности [98]. Таким образом, этот процесс, похоже, не ухудшает качество спермы. Однако инкапсуляция спермы не нашла коммерческого применения, вероятно, из-за более высокой стоимости по сравнению с расширенной спермой [99].

  Дальнейшее хранение разведенной спермы осуществляется при температуре 17 °C. При этой температуре метаболизм спермы снижается, что необходимо для увеличения срока хранения [78]. Критическая нижняя температура для выживания сперматозоидов у свиней была установлена ​​при 12 °C, тогда как хранение при 15–17° не оказывало вредного влияния на подвижность и жизнеспособность сперматозоидов хряков [78]. Механизм старения спермы во время хранения был изучен с помощью новых анализов качества спермы. Результаты показали, что это связано, среди прочего, с перекисным окислением липидов [100] и изменениями текучести мембраны сперматозоидов, инициирующими капацитоподобные изменения [82].

  Следует избегать контакта с воздухом во время хранения, так как он повышает рН, что отрицательно коррелирует с подвижностью сперматозоидов [101]. Поэтому для стабилизации pH используется множество различных буферных систем.

  Совсем недавно Schulze et al. [102] показали, что переворачивание доз во время хранения во избежание седиментации оказывает пагубное влияние на подвижность сперматозоидов. Хотя биологический механизм не мог быть объяснен, авторы предположили, что это связано с усилением окислительного стресса.

  Также была исследована гипотеза о том, что контролируемый стресс перед хранением может защитить сперму. Исследование с участием 7 гибридных хряков показало, что воздействие на сперму гидростатическим давлением по сравнению с обычной обработкой приводит к более высокой прогрессивной подвижности [103]. Во второй части последнего исследования каждый эякулят 14 гибридных хряков разделяли на две части и либо обрабатывали гидростатическим давлением, либо обрабатывали обычным способом. Впоследствии 104 самки были осеменены либо обработанной, либо контрольной спермой, и у свинок, осемененных стрессовой спермой, наблюдалось увеличение размера помета, но, что интересно, этот эффект не наблюдался у повторнородящих свиноматок [103].

  John F. Kennedy and PT 109

  Столкновение лейтенанта Джона Ф. Кеннеди с японским эсминцем в ночь на 1 августа 1943 года, возможно, стало самым известным боем малых судов в истории военно-морского флота, и это была настоящая катастрофа.

  Позднее, когда Кеннеди попросили объяснить, как он стал героем, он лаконично ответил: «Это было невольно. Они потопили мою лодку».

  Засада идет наперекосяк

  В проливе Блэкетта, к югу от Коломбангары на Соломоновых островах, беззвездная и безлунная ночь 1 августа 1943 года была очень темной. Подобная чернильная чернота могла дезориентировать даже опытных моряков.

  На ее стоянке стоял

  ПТ-109, один из пятнадцати катеров ПТ («Патрульные торпедные катера»), отправившихся в бой, повредить, а может быть, и повернуть назад знаменитый «Токийский экспресс». Американские войска дали это название более или менее регулярному конвою японских военно-морских сил с припасами для солдат, сражающихся с наступлением американских войск на островах южнее.

  Когда патруль действительно вступил в контакт с «Токийским экспрессом» — три японских эсминца действовали как транспорты, а четвертый — как эскорт, — столкновение не заладилось.Было выпущено 30 торпед, не повредивших японские корабли. Ни одно судно США не пострадало и не пострадало. Лодкам, израсходовавшим запас торпед, было приказано вернуться домой. Те немногие, у кого еще были торпеды, остались в проливе для еще одной попытки.

  Столкновение!

  PT 109 была одной из оставленных лодок. Лейтенант Кеннеди соединил свою лодку с двумя другими, PT 162 и PT 169. Три лодки рассредоточились, образуя пикетную линию через пролив. Примерно в 2:30 ночи в трехстах ярдах от правого борта PT 109 из темноты вырисовывался силуэт.Молодой лейтенант и его команда сначала подумали, что это еще один ПТ-катер. Когда стало очевидно, что это был один из японских эсминцев, Кеннеди попытался повернуть на правый борт, чтобы пустить в ход свои торпеды. Но времени не хватило.

  Эсминец, позже идентифицированный как  Amagiri , ударил PT 109 прямо перед торпедным аппаратом правого борта, оторвав правый кормовой борт лодки. От удара Кеннеди отбросило в кабину. Большая часть экипажа была сброшена в воду.Единственный человек под палубой, инженер Патрик МакМахон, чудом спасся, хотя и сильно обгорел из-за взрыва топлива.

  Опасаясь, что PT 109 загорится, Кеннеди приказал людям, оставшимся на месте крушения, покинуть корабль. Но кильватер эсминца разогнал горящее топливо, и когда огонь начал стихать, Кеннеди отправил своих людей обратно к тому, что осталось от лодки. Из обломков Кеннеди приказал людям, которые были с ним, Эдгару Мауэру и Джону Э. Магуайру, определить местонахождение их товарищей по команде, все еще находящихся в воде.Леонард Том, Джерард Зинсер, Джордж Росс и Раймонд Альберт смогли вернуться вплавь самостоятельно.

  Кеннеди поплыл к МакМахону и Чарльзу Харрису. Кеннеди буксировал раненого МакМахона за ремень спасательного жилета и попеременно упрашивал и ругал измученного Харриса, чтобы тот помог ему пережить трудный заплыв. Тем временем Том вытащил Уильяма Джонстона, который был ослаблен бензином, который он случайно проглотил, и тяжелыми испарениями, которые стояли на воде. Наконец Рэймонд Старки выплыл из того места, где его отбросило током.Плавая на скитальце и вокруг него, экипаж подвел итоги.

  Гарольд Марни и Эндрю Джексон Киркси исчезли при столкновении, скорее всего, погибли при столкновении. Все люди были истощены, некоторые получили ранения, а некоторым стало плохо от горючих газов. В этом районе не было никаких признаков других лодок или кораблей; мужчины боялись стрелять из ракетницы, опасаясь привлечь внимание японцев, которые были на островах со всех сторон. Хотя обломки все еще находились на плаву, они набирали воду и утром 2 августа перевернулись.

  Обсудив варианты, люди бросили останки PT 109 и направились к островку в трех с половиной милях отсюда.

  В поисках земли

  Кеннеди был членом команды по плаванию в Гарварде; даже буксируя МакМэхона ремнем, зажатым в зубах, расстояние его не испугало. Некоторые из других мужчин также были хорошими пловцами, но некоторые — нет; двое, Джонстон и Мауэр, вообще не умели плавать. Последние двое были привязаны к доске, которую остальные семеро мужчин тянули и толкали, как могли.

  Кеннеди первым прибыл на остров. Он назывался Сливовый пудинг, но люди называли его «Птичий» остров из-за гуано, покрывающего кусты. Измученному Кеннеди пришлось помочь подняться на пляж человеку, которого он буксировал. Он рухнул и стал ждать остальных членов экипажа. Но плавание Кеннеди не закончилось.

  Встревоженный проходившей поблизости японской баржей, Кеннеди решил вплавь спуститься в Фергюсонский пролив, через который проходили американские PT-катера, когда они действовали в проливе Блэкетта. Прыгая по островам и цепляясь за рифы, Кеннеди выбрался в проход, где он топтался по воде в течение часа, прежде чем решил, что катера PT действовали в ту ночь в другом месте.

  На обратном пути его чуть не убило сильное течение, отбросившее его в пролив Блэкетта, а затем обратно в пролив Фергюсона. Снова совершив утомительное путешествие, Кеннеди остановился на острове Леорава, к юго-востоку от острова Берд, где он проспал достаточно долго, чтобы восстановить силы перед последним этапом путешествия. Вернувшись на Птичий остров, Кеннеди проспал весь день, но также взял с Росс обещание отправиться в ту же поездку той же ночью.Но и Росс, к сожалению, не увидел никаких следов ПТ-катеров.

  В поисках пути домой

  4 августа Кеннеди повел людей обратно в океан, направляясь к острову Оласана в надежде найти пищу и пресную воду, а также пытаясь приблизиться к проливу Фергюсон. Кеннеди снова потянул МакМэхона за лямку спасательного жилета, в то время как остальная часть экипажа сгрудилась вокруг доски и пробралась вперед.

  Остров Оласана оказался чем-то вроде разочарования.Кокосов было больше, но они вызывали тошноту у некоторых мужчин. Мужчины не нашли пресной воды, и они слишком нервничали из-за японских патрулей, чтобы исследовать больше, чем небольшой уголок этого большого острова.

  Когда ночь 4 августа стала сырой и холодной, Кеннеди решил попробовать следующий остров на следующий день. Остров Нару является последним в цепочке, и его восточные берега выходят на пролив Фергюсона. Кеннеди и Росс поднялись на его берег чуть позже полудня 5 августа.

  Опасаясь вражеских патрулей, двое мужчин осторожно прошли через заросли, но увидели только обломки небольшого японского судна на рифе. На пляже они заметили небольшую коробку с японскими этикетками. Когда они открыли его, они были рады обнаружить, что внутри были японские конфеты. Более того, чуть дальше по острову они обнаружили банку с водой и спрятанную в кустах лодку на одного человека.

  После выпивки Кеннеди и Росс возвращались на пляж, когда увидели двух мужчин у японского крушения. Мужчины, явно островитяне, испугались и уплыли от места крушения на каноэ, несмотря на окрики Кеннеди. Той ночью Кеннеди снова направил каноэ в Фергюсонский пролив, снова не обнаружив никаких американских судов.

  Кеннеди решил вернуться на каноэ в Оласану; он остановился на достаточное время, чтобы собрать конфеты и воду и передать другим мужчинам, оставив Росса отдыхать до следующего утра. Прибыв в Оласану, Кеннеди обнаружил, что двое мужчин, которых он и Росс видели в Нару, вступили в контакт с остальными членами экипажа.Двое мужчин, Биуку Гаса и Эрони Кумана, были островитянами-разведчиками союзников. Поспешный отъезд из Нару утомил их и мучил жажду, и они остановились за кокосами в Оласане, где находился Том.

  На следующее утро, 6 августа, Кеннеди вернулся с Гасой и Куманой в Нару, перехватив по пути Росса, когда тот плыл обратно. Островитяне показали двум американцам, где на Нару была спрятана лодка. Кеннеди не знал, как послать сообщение, но Гаса показал ему, как нацарапать несколько слов на скорлупе зеленого кокоса.

  Гаса и Кумана ушли с сообщением —

  НАУРО ISL
  КОМАНДИР . . . РОДНЫЕ ЗНАЕТ
  POS’IT . . . ОН МОЖЕТ ПИЛОТИРОВАТЬ. . . 11 ALIVE
  НУЖНА МАЛЕНЬКАЯ ЛОДКА . . . КЕННЕДИ

  Пока они ждали спасателей, Кеннеди настоял на том, чтобы отправиться с Россом в Фергюсонский проход на двухместном каноэ. Сильные волны затопили каноэ и так потрепали людей, что они едва вернулись в Нару. Но на следующее утро, 7 августа, вскоре после пробуждения Кеннеди и Росс в Нару появились восемь островитян.Они принесли еду и инструкции от местного берегового наблюдателя союзников лейтенанта А. Эванса, который приказал Кеннеди прийти на пост Эванса.

  Остановившись на достаточно долгое время в Оласане, чтобы накормить команду, островитяне спрятали Кеннеди под кучей пальмовых листьев и отвезли его на остров Гому в проливе Блэкетта. Ранним вечером 7 августа, чуть более чем через шесть дней после гибели PT-109, Кеннеди вышел на Гому. Вместе с Эвансом еще предстояло спланировать спасательную операцию, что немаловажно в водах, удерживаемых противником, но худшее из испытаний PT 109 уже позади.

  Спасение

  Эванс уже уведомил своего командира об обнаружении выживших на PT-109, и командир базы предложил отправить спасательную миссию прямо в Оласану. Кеннеди настоял на том, чтобы его подобрали первым, чтобы он мог провести спасательные шлюпки, PT 157 и PT 171, среди рифов и отмелей цепи островов.

  Поздно ночью 7 августа катера встретили Кеннеди в точке встречи, обменявшись условным сигналом из четырех выстрелов. В револьвере Кеннеди осталось всего три патрона, поэтому для четвертого он позаимствовал винтовку у Эванса.Встав в каноэ, чтобы подать сигнал, Кеннеди не ожидал отдачи винтовки, которая вывела его из равновесия и бросила в воду. На борт PT 157 забрался промокший насквозь и совершенно разъяренный лейтенант ВМФ.

  Катера PT пересекли пролив Блэкетта под руководством Кеннеди и рано утром 8 августа подошли к острову Оласана. Все измученные люди PT 109 спали. Кеннеди начал звать их, к большому огорчению своих спасителей, которые нервничали из-за близости японцев.

  No related posts.